Qubit Systems

Systém pro analýzu CO2 u rostlin

Code Q-Box CO650

Sada Q-Box CO650 pro analýzu CO2 u rostlin je určena k měření fotosyntézy, respirace a transpirace listů umístěných v průtokové listové komoře. Sadu lze používat v laboratoři i v terénu (s volitelnou baterií). Software Q-Box CO650 automaticky kontroluje referenční koncentrace CO2 a vodní páry a průběžně vypočítává rychlost fotosyntézy a transpirace.

Zjistit více

Požádat o nabídku Doporučte kolegovi

Ukázat další produkty

Rostliny

Výhody

Vlastnosti

Modulární systém pro měření výměny plynů
Průtoková listová komora
Komponenty zaměnitelné s ostatními sadami Q-Box
Automatické výpočty rychlosti výměny uhlíku a vody
Umístěno v odolném kufru pro snadnou přepravu a instalaci
Použití v laboratoři i v terénu (s volitelnou baterií)

Aplikace

Měření rychlosti fotosyntetické výměny CO2
Měření rychlosti transpirace
Studium účinnosti využití vody (WUE)
Měření rychlosti temnotního dýchání
Studium listů, kořenů i celých rostlin (s volitelnými komorami)
Respirace půdy nebo živočichů s doplňkovými komponentami

Světlo a teplota

LED zdroj světla (A113) dodává listu fotosynteticky účinné záření (PAR) s minimální tepelnou zátěží. Při maximálním výkonu poskytuje přibližně 2000 µmol fotonů/m2/s a je dodáván kalibrovaný (v softwaru). Intenzitu světla tak lze přesně nastavit bez použití luxmetru. Pro výpočet vodivosti listu je nutné měřit teplotu listu, kterou zajišťuje S173 – termistor pro měření teploty listu, umístěný ve spodní části průtokové listové komory (G112). Analogové signály ze všech senzorů jsou převáděny na digitální pomocí tří integrovaných rozhraní LabQuest Mini (9 kanálů). Data se zobrazují, zaznamenávají a zpracovávají na počítači PC nebo Macintosh v softwaru Logger Pro. Každá sada obsahuje přizpůsobené experimentální soubory pro sběr dat, automatické výpočty a další analýzy.

Fotosyntéza a respirace

Sada Q-Box CO650 pro analýzu CO2 u rostlin pracuje s jedním infračerveným analyzátorem CO2 (Q-S151). Koncentrace CO2 vstupujícího do listové komory a vystupujícího z ní se měří v různých časech stejným analyzátorem. Uživatelsky nastavitelné řízení sestavy solenoidových ventilů DCU přepíná mezi referenčním měřením a měřením vzorku. Je-li list osvětlen, umožňuje rozdíl koncentrací CO2 na vstupu a výstupu (diferenční CO2) spolu s měřením průtoku plynu komorou automatický výpočet rychlosti fotosyntetické fixace CO2. Měření výměny CO2 ve tmě poskytuje data o temnotním dýchání.

Transpirace

Sada Q-Box CO650 obsahuje senzor vlhkosti a teploty (Q-S161), který měří relativní vlhkost vzduchu před průchodem listovou komorou a po něm. Současně se měří teplota u senzoru RH. Rozdíl RH mezi vstupním a výstupním plynem, teplota, průtok listovou komorou a teplota listu se využívají k automatickému výpočtu rychlosti transpirace listu.

Sadu Q-Box CO650 lze s volitelnou baterií používat v terénu

Software Q-Box CO650

Ukázka surových dat z listu zelence chocholatého

Automatické výpočty fotosyntézy a transpirace (strana 2 v softwaru)

Součásti

Standardní součásti systému

Q-A101 Laboratorní stojan (samostatně stojící a/nebo integrovaný do Q-Box)
A113 LED zdroj světla kalibrovaný v softwaru
Q-G267 Monitor průtoku, plynové čerpadlo 2× (1 l/min bez zátěže)
G112 Průtoková listová komora
G122 Velké plynové vaky (2)
Q-S151 Analyzátor CO2 (0–2000 ppm) (včetně pohlcovačů CO2 a H2O)
Q-S161 Senzor RH/teploty
S173 Listový termistor
A383 Solenoidový ventil DCU pro přepínání mezi referenčním plynem a plynem vzorku
S181 Senzor absolutního tlaku
C610 Tři integrovaná datová rozhraní LabQuest Mini (9 analogových kanálů)
C901 Software Logger Pro
C404 Přizpůsobené experimentální konfigurační soubory pro sběr, zobrazení a analýzu dat
Q-Box Accessory Kit Hadičky, filtry, konektory
Odolný vodotěsný kufr pro senzory a analyzátory
Návod k obsluze
Samostatné napájecí zdroje pro nezávislé použití senzorů a analyzátorů

Publikace

Iseas MS et al (2025) Influence of the microtopography of patagonian peatbogs on the fluxes of greenhouse gasses and dissolved carbon in porewater. Ecohydrology & Hydrobiology 25, 155-165,

Rudresh HS et al (2024) Comparative analysis of desiccation tolerance in Oesporangium elegans and Mickelopteris cordata. Vegetos 37: 1244-1256

Petrova S, Petkova M. (2023) Plant Traits of Tilia tomentosa Moench, Fraxinus excelsior L, and Pinus nigra J.F. Arnold as a proxy of urbaniazation. Forests 14, 800

Oconor EF et al (2023) Growth and photosynthetic development of Swietenia mahagoni in svbstrates inoculated with arbuscular mycorrhizal fungi. Bosque 44,

Marriboina S et al. (2020) Systematic hormone-metabolite network provides insights of high salinity tolerance in Pongamia pinnata (L.) pierre

Yathisha NS et al. (2020) Vegetative desiccation tolerance in Eragrostiella brachyphylla: biochemical and physiological responses. Heliyon 6, Cell Press Online

Sengupta D et al. (2019) Photosynthetic performance and sugar variations during key reproductive stages of soybean under potassium iodide-simulated terminal drought. Photosynthetica 57: 458-469

Jacotot, A et al. (2018) Effects of elevated atmospheric CO₂ and increased tidal flooding on leaf gas-exchange parameters of two common mangrove species: Avicennia marina and Rhizophora stylosa. Photosynth Res 138, 249–260.

Van de Poel B et al (2016) Transcriptome Profiling of the Green Alga Spirogyra pratensis (Charophyta) Suggests an Ancestral Role for Ethylene in Cell Wall Metabolism, Photosynthesis, and Abiotic Stress Responses. Plant Physiology 172 533-546

Tian L et al. (2015) Research on the Effect of Electrical Signals on Growth of Sansevieria under Light-Emitting Diode (LED) Lighting Environment. PLoS ONE 10(6):1-18

Eisingera W. et al. (2012) Microtubules Are Essential for Guard-Cell Function in Vicia and Arabidopsis. Molecular Plant 5: 601-610

Související produkty

Vilber

NEWTON 7.0 BIO for plant imaging

Požádat o nabídku