Neurostar

Stereotaktický robot Robot Stereotaxic – StereoDrive

Code StereoDrive

Plně motorizovaný stereotaktický nástroj pro potkany, myši i větší zvířata. Obsahuje software s digitálním atlasem mozku a lokací bregmatu. Počítačově řízená korekce náklonu hlavy a nastavení úhlu. Přesnost 1 mikron.

Zjistit více o produktu

Požádat o nabídku Doporučte kolegovi

Ukázat další produkty

Operace a zákroky

Výhody

Neurostar je vynálezcem i jediným výrobcem stereotaktického robota Robot Stereotaxic – StereoDrive. Při práci s tímto rámem se můžete soustředit na pokus bez nutnosti manipulace s přístrojem. Nastavení sondy je u StereoDrive motorizované a navigované počítačem. Integrovaný atlas mozku (Atlas Integration) a intuitivní řízení pohybu přináší vysokou přesnost a vysokou propustnost elektrofyziologických a stereotaktických injekcí.

Funkce

řízení počítačem
integrovaný atlas mozku (Atlas Integration) s automatickou
změnou měřítka vzhledem k bregmatu a lambda bodům
korekce náklonu hlavy
stanovení bregmatu
nastavení úhlu eliminující lidskou chybu

vysoká přesnost
vysoká propustnost
plánování pokusu
vytvoření a uložení nastavených cílových oblastí
intuitivní navigace

Eliminace běžných nevýhod

Jednou z vynikajících předností stereotaktického robota StereoDrive je skutečnost, že při jeho použití nemusíte věnovat svou pozornost konverzi koordinátů rámu na koordináty atlasu. Soustředíte se pouze na atlas – všechny potřebné výpočty za vás provede software.
StereoDrive dosahuje nebývale vysoké přesnosti polohování nedosažitelné u manuálních stereotaktických přístrojů či přístrojů s digitálním odečtem.
U přístroje StereoDrive je zaměření sondy prováděno počítačově, čímž se vyloučí vibrace způsobené pohybem rukou.

Vlastníte stereotaktický přístroj od Kopfa nebo Stoeltinga?

Upgadujte na Robot Stereotaxic od Neurostar.
Stereotaktický robot od Neurostar nabízí uzpůsobení robota pro U-rám, který používáte.

Více

Ke stažení

neurostarproducts.pdf

Stáhnout

Publikace

2013

Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory.

Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013)
The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.

Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats.

Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013)
Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.

Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat.

Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013)
J. Physiol. 2013 Aug 15;591(Pt 16):4027-42. doi: 10.1113/jphysiol.2013.257063. Epub 2013 Jun 17.

Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes.

Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013)
Neuropharmacology. 2013 Oct;73:160-73. doi: 10.1016/j.neuropharm.2013.05.026. Epub 2013 Jun 5.

Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy.

Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013).
PLOS ONE, 8(6), e66962.

The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein.

Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013)
Nature, 501(7465), 102-106.

The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons.

Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013)
Journal of Neurophysiology, 109(11), 2827-2841.

2012

Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions.

Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012).
Glia, 60(10), 1468-1480.

Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target.

Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012)
Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.

2011

Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.

Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011)
Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.

2010

A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease.

Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9

A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat.

Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.

Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task.

Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.

A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes.

Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.